搜索解剖取材
动物解剖与组织取材
📝 服务介绍
动物解剖取材在动物实验终点按照标准化流程进行安乐死、解剖暴露各器官、按需取材并固定或冻存，确保取材质量和一致性，是后续病理、分子检测等分析的基础。
🔬 实验原理
动物解剖取材原理：实验结束后系统性解剖小鼠，观察各脏器大体形态，取材固定用于后续病理/分子分析。标准流程：安乐死→大体观察→胸腔/腹腔暴露→脏器取材(心/肝/脾/肺/肾/脑/肠/瘤)→称重→固定。
📋 应用领域
- 实验动物规范取材与组织采集
- 多器官组织样本批量采集与保存
- 脏器称重与大体病理记录
- 血液/血清/组织液样本采集
- 取材后样本分装与冻存
- 解剖结构用于教学与形态学研究
⭐ 服务优势
- 标准化流程：符合动物伦理安乐死
- 多器官取材：心肝脾肺肾脑肠等
- 多固定方式：多聚甲醛/戊二醛/液氮
- 取材规范：大小一致避免固定不透
🔄 服务流程
- 动物称重记录
- 安乐死（CO2窒息或戊巴比妥钠过量麻醉）
- 固定四肢开腹暴露胸腔腹腔
- 观察大体病理改变拍照
- 按需取材（肿瘤/各脏器称重）
- 组织固定（4%多聚甲醛24-48h）或液氮速冻
- 血样采集（心脏采血/眼眶静脉丛）
📋 服务详情 / 客户提供
| 项目 | 要求 |
|---|---|
| 动物信息 | 品系/数量/分组/处理方案 |
| 取材组织 | 明确需要取材的器官/组织 |
| 固定方式 | 多聚甲醛固定/液氮冻存/RNA保存液 |
| 血样需求 | 是否需采血及血清/血浆/全血 |
| 特殊要求 | 电镜标本（戊二醛）/流式标本（活细胞） |
📊 结果展示
固定组织标本/冻存组织标本/血样、取材照片及记录（含脏器重量数据）、解剖报告。
📦 最终交付
固定组织标本/冻存组织标本/血样、取材照片及记录（含脏器重量数据）、解剖报告。
Q: 组织取材大小有何要求
固定组织块建议不超过1x1x0.5cm，确保固定液渗透（固定液体积为组织体积10-20倍）。大器官需修切多个部位分别固定。电镜标本1mm3小块。
Q: 取材后组织如何保存
固定后组织可4C保存数月（需定期更换固定液）；冻存组织-80保存，避免反复冻融；RNA样品需立即加入RNA保存液或液氮速冻。
Q: 取材后组织如何固定
4%多聚甲醛(10%中性福尔马林)固定，组织:固定液=1:10-20。固定时间24-48h(不宜过久掩盖抗原)。大脏器(肝/脑)需切开确保渗透。固定后转入70%乙醇暂存。用于IF的组织需4°C冷PFA 4-6h后蔗糖脱水OCT包埋冰冻切片。
Q: 不同组织取材有什么注意事项
脑：心脏灌流PBS→4%PFA灌注固定后取脑(避免自溶)。肠：取材时保留系膜标记近端/远端，卷肠法处理。骨：去肌肉后4%PFA固定48h→EDTA脱钙2-4周→脱水包埋。肿瘤：测量体积后取中心/周边组织。淋巴结：体视显微镜下取材防丢失。
Q: 脏器系数怎么算
脏器系数=脏器重量(g)/体重(g)×100%。常用肝/脾/肾/心系数。脏器增大：炎症/肥大/肿瘤浸润。脏器减小：萎缩/纤维化。需同时做病理确认原因。每组n≥6，雌雄分开统计。注意：取材前需排净血液(滤纸吸干)。
Q: 灌流固定怎么做
1)深麻醉(戊巴比妥 50mg/kg i.p.)；2)开胸暴露心脏；3)输液针左心室穿刺剪开右心耳；4)PBS 20mL灌流冲洗血液(肝变白)；5)4%PFA 20mL灌流固定(躯干僵硬)；6)取材后浸入4%PFA继续固定12-24h。脑/脊髓必须灌流固定防自溶。
Q: 解剖后血液怎么收集
1)摘眼球取血(采血量多，适于血清分离)；2)心脏穿刺(终末期采血)；3)颌下静脉(存活采血200μL/次)；4)尾静脉(少量连续采血)。抗凝剂：EDTA(血常规/血浆)或肝素(生化)。凝血后3000g 10min取血清。血常规用EDTA抗凝血直接上机。