GST Pull-down

体外蛋白互作验证

技术服务

GST Pull-down

体外蛋白互作验证

📝 服务介绍

GST Pull-down将GST标签诱饵蛋白固定在谷胱甘肽琼脂糖珠上,与细胞裂解液或纯化猎物蛋白孵育,通过GST标签富集检测互作蛋白,是验证蛋白-蛋白直接互作的经典体外方法。

🔬 实验原理

GST Pull-down原理:重组GST融合蛋白(诱饵)固定在GSH珠上,与细胞裂解液孵育捕获互作蛋白(猎物),洗涤后WB/质谱鉴定互作蛋白。是体外验证蛋白-蛋白互作的经典方法。

📋 应用领域

  • 重组蛋白-蛋白体外互作验证
  • 结构域介导的特异性结合研究
  • GST融合蛋白亲和纯化互作
  • 蛋白-多肽/核酸体外结合
  • 诱饵蛋白结合伙伴初步筛选
  • 蛋白间结合亲和力定性评估

⭐ 服务优势

  • 验证直接互作:体外纯化系统
  • 可控条件:可调整浓度/盐离子/时间
  • 双向验证:诱饵/猎物可互换标签
  • 兼容质谱:发现未知互作

🔄 服务流程

  1. GST融合蛋白表达纯化
  2. GST蛋白固定GSH珠
  3. 与猎物蛋白/细胞裂解液孵育
  4. 洗涤去除非特异结合
  5. SDS-PAGE电泳
  6. Western Blot或质谱检测

📋 服务详情 / 客户提供

项目要求
诱饵蛋白GST融合蛋白序列或纯化蛋白
猎物蛋白细胞裂解液或纯化蛋白
检测方式WB/质谱
对照设置GST-only对照/Input对照

📊 结果展示

Pull-down WB图(含GST对照)、实验报告。

📦 最终交付

Pull-down WB图(含GST对照)、实验报告。

Q: GST Pull-down背景高怎么办

增加洗涤严格性(NaCl 300-500mM+0.1% NP-40)、增加洗涤次数(5-8次)、预清除裂解液(GSH珠预先孵育去除非特异)、设GST-only对照扣除背景。

Q: 诱饵蛋白不溶怎么办

GST融合蛋白在大肠杆菌中易形成包涵体。尝试低温诱导(16-25C 0.1mM IPTG)、换用MBP/Trx标签提高溶解性、或改用哺乳细胞表达纯化。

Q: GST Pull-down和Co-IP怎么选

Co-IP:内源性抗体捕获生理互作(内源性蛋白量),但依赖抗体。Pull-down:重组诱饵蛋白捕获互作蛋白,不需抗体但需纯化诱饵蛋白(可能非生理浓度)。生理互作验证选Co-IP,初筛互作蛋白或验证直接互作选Pull-down。建议Pull-down初筛→Co-IP验证。

Q: GST Pull-down做不出来怎么办

1)GST融合蛋白纯度不够(SDS-PAGE确认>90%纯度);2)诱饵蛋白无活性(变性纯化需复性→建议可溶表达4°C);3)互作弱/间接(加交联剂);4)猎物丰度低(增加裂解液量5-10mg);5)洗涤太强(减少NP-40至0.1%);6)GST标签干扰(改用His/Flag标签)。

Q: GST Pull-down对照怎么设

1)GST alone对照(空GST珠排除GST本身非特异结合);2)Input(裂解液10-20%确认猎物蛋白表达);3)阴性对照(突变互作域的诱饵蛋白);4)阳性对照(已知互作蛋白对)。GST alone是最重要对照排除GST标签的非特异结合。

Q: GST融合蛋白纯化注意事项

1)BL21表达4°C 0.1mM IPTG过夜(可溶表达避免包涵体);2)裂解液含1% Triton帮助溶膜蛋白;3)GSH珠4°C结合2h;4)洗涤3-5次(PBS+0.1%Triton);5)Elution 10mM GSH或3mM GST;6)SDS-PAGE确认纯度>90%;7)BCA定量。蛋白量10-50μg/反应。

Q: GST Pull-down能检测直接互作吗

Pull-down用重组诱饵蛋白+细胞裂解液,检测的是直接+间接互作(裂解液含多种蛋白)。检测直接互作需用纯化的两个重组蛋白做Pull-down(无裂解液)。直接互作也可用SPR/ITC(表面等离子体共振/等温滴定)做定量(亲和力KD)。

技术服务
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