肿瘤模型构建

皮下/原位/转移肿瘤模型

技术服务

肿瘤模型构建

皮下/原位/转移肿瘤模型

📝 服务介绍

肿瘤模型构建将肿瘤细胞接种至免疫缺陷或免疫健全小鼠体内,构建皮下成瘤、原位移植或转移模型,是抗肿瘤药物评价、肿瘤机制研究的核心体内实验平台。

🔬 实验原理

肿瘤模型构建原理:在免疫正常或免疫缺陷小鼠(裸鼠/SCID/NSG)皮下或原位接种肿瘤细胞系/患者肿瘤组织,形成可测量的肿瘤。皮下移植瘤模型用于药效评价,原位模型更接近临床,PDX保留肿瘤异质性。

📋 应用领域

  • 人源/鼠源实体瘤模型构建与传代
  • 抗肿瘤药物体内药效评价
  • 新药候选物的肿瘤生长抑制评估
  • 耐药剂型转化与联合用药研究
  • 肿瘤微环境与转移机制研究
  • CAR-T/免疫治疗体内验证

⭐ 服务优势

  • 多模型可选:皮下/原位/转移/自发
  • 多细胞系:100+肿瘤细胞系可选
  • 多品系小鼠:BALB/c-nu/NSG/C57等
  • 标准化操作:成瘤率>90%

🔄 服务流程

  1. 细胞培养至对数生长期
  2. 消化计数调整浓度
  3. 接种(皮下/原位/尾静脉)
  4. 定期测量肿瘤体积(V=1/2xLxW^2)
  5. 到达终点(体积1500mm3或时间到)
  6. 解剖取瘤称重拍照
  7. 取材固定(多聚甲醛/液氮)

📋 服务详情 / 客户提供

项目要求
细胞系指定肿瘤细胞系名称及接种量
模型类型皮下/原位/转移/PDX
小鼠品系BALB/c-nu/NSG/C57BL6或由平台推荐
分组方案对照组/给药组/剂量/频次
终点标准肿瘤体积上限/生存期/天数

📊 结果展示

肿瘤生长曲线图、肿瘤重量统计图、肿瘤照片、组织切片及实验报告。

📦 最终交付

肿瘤生长曲线图、肿瘤重量统计图、肿瘤照片、组织切片及实验报告。

Q: 皮下成瘤速度不一致怎么办

确保细胞状态良好(对数生长期活率>95%)、接种细胞数一致(5x10^6-1x10^7/点)、Matrigel混合提高成瘤率(1:1)。同一实验同一批次接种。

Q: NSG和BALB/c-nu小鼠如何选择

BALB/c-nu无T细胞但保留B和NK细胞,适合大多数人源肿瘤移植;NSG无T/B/NK三重免疫缺陷,成瘤率更高适合低成瘤性肿瘤或PDX。

Q: 皮下移植瘤接种多少细胞

5×10⁵-5×10⁶细胞/100-200μL/点,取决于细胞系致瘤性。致瘤性强的(如HepG2)5×10⁵即可,弱的需1×10⁷。用Matrigel 1:1混合提高致瘤率。接种部位:右侧腋下皮下。接种后每周2次测量肿瘤体积(V=长×宽²/2)。

Q: 肿瘤生长太快或太慢怎么办

太快:减少接种细胞数、用免疫正常小鼠(有免疫排斥)。太慢:增加细胞数、用Matrigel辅助、确认细胞活力>90%、选择免疫缺陷更严重的小鼠(NSG>SCID>裸鼠)。确认细胞系致瘤性(体外增殖/侵袭能力)。

Q: 不同品系小鼠怎么选

裸鼠(nu/nu):T细胞缺陷,常用,适用于大多数人源肿瘤移植。SCID:T+B细胞缺陷。NSG(NOD-SCID IL2Rγnull):最严重免疫缺陷,PDX/CDX成功率高。免疫正常小鼠(C57BL/6、BALB/c):用于同源移植(Mouse肿瘤细胞)研究免疫治疗。

Q: 肿瘤体积测量标准

V=0.5×长径×短径²(椭球体公式)。每周2次卡尺测量。终点:肿瘤体积达2000mm³或小鼠体重下降>20%。记录肿瘤生长曲线(时间-体积)。每组n≥6只。药效评价常用TGI(肿瘤生长抑制率)=(1-T/C)×100%。

Q: PDX和CDX有什么区别

CDX(细胞系来源移植瘤):细胞系传代培养后接种,均一但失去肿瘤异质性,致瘤快。PDX(患者来源移植瘤):新鲜肿瘤组织直接移植,保留异质性和基质,更接近临床但传代慢、成功率低(20-70%)。药效筛选选CDX,临床模拟选PDX。

技术服务
分子与免疫实验技术服务
细胞生物学技术服务
病理技术服务
动物实验技术服务
类器官技术服务
分子互作技术服务
蛋白组学技术服务
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